Mycoplasma hominis (количественно) (соскоб)

Подготовка пациентов и отбор пробы с каждой локализации строго по инструкции (см. комментарий).
Соскобы/мазки/ отделяемое со слизистых различных локализаций вне урогенитального тракта (конъюнктива, ротоглотка, носоглотка, перианальная зона, патологический очаг) в пробирке с транспортной средой для ПЦР. Инструмент для отбора биоматериала (УГЗ тип А или цитощетка стандартная) выбирается лечащим врачом в зависимости от клинической задачи, выбранной локализации, выявляемого возбудителя (см. комментарий).
Перед взятием биоматериала обеспечить стерильные условия, выделив исследуемую зону стерильными салфетками (при необходимости). В места взятия биоматериала удалить слизь, гной или другое мешающее анализу отделяемое стерильным марлевым тампоном (сухим или смоченным стерильным физиологическим раствором.
Внимание! Строго избегать внешней контаминации при взятии и подготовке проб! Следует полностью исключить возможность соприкосновения рабочей части инструментов с перчатками и другими посторонними поверхностями! Техника отбора биоматериала реализуется в соответствии с выбранным инструментом и локализацией (см. инструкцию) с вращением или поступательным движением, обеспечивающим наиболее полное и равномерное нанесение биоматериала на рабочую часть инструмента. Биоматериал с рабочей части зонда немедленно перенести (инокулировать) в жидкую транспортную среду осторожным помешиванием. Рабочую часть инструмента в пробирке не оставлять. Плотно закрыть крышку пробирки. Проверить герметичность. Промаркировать штрих-кодом. В
направлении/ заявке, по возможности, отметить задачу исследования, тип биоматериала, локализацию, предварительный диагноз, дополнительную клиническую информацию.
Не вскрывать! Не замораживать! Не центрифугировать! Избегать прямого воздействия солнечного света!
Хранение и транспортировка по режиму:
(1) Оптимальный срок и условия доставки – не более 36 ч при +2– +8°С;
(2) Допустимый срок и условия доставки – не более 72 ч при +2 – +4°С.

Комментарий.
• А. Подготовка пациента.
а) За 24-48 ч. перед исследованием (по возможности) исключить в месте предполагаемого отбора биоматериала лекарственных и парафармацевтических препаратов местного действия (мазей, кремов, гелей, капель, полосканий и др.). При исследованиях с конъюнктивы нельзя применять декоративную и лечебную косметику. При исследованиях ротоглотки нежелательно применение зубной пасты в период 4-5 ч. перед исследованием.
б) Следует предупредить пациента, что желательно (по возможности) исключить контакт предполагаемой исследуемой зоны с биологическими жидкостями и слизистыми другого человека в срок 24-48 ч.
в) Следует учитывать, что для контроля эффективности лечения по эрадикации возбудителя методом ПЦР необходим более длительный период, чем для микробиологического исследования, так как некоторое время со слизистых может выделяться ДНК мертвых микроорганизмов. Поэтому исследование рекомендуется проводить не ранее, чем через 2-3 недели после окончания лечения.
г) При одновременном взятии биоматериала на другие исследования с той же локализации – следует использовать отдельные инструменты. Последовательность взятия проб определяется лечащим врачом в зависимости от типа возбудителя и диагностической задачи.
• Б. Основные принципы исключения отрицательных факторов, влияющих на ПЦР-реакции и результаты исследования при взятии биоматериала.
а) При отборе проб для ПЦР следует тщательно избегать контаминации химическими веществами (спиртами, дезинфицирующими и моющими агентами и др.), кровью, слизью, гноем и микроорганизмами из внешней среды.
б) Непосредственно перед отбором биоматериала удалить слизь и другое отделяемое сухим медицинским тампоном (желательно не использовать материал из натурального хлопка). Внешние поверхности (патологический очаг) или можно обмыть при помощи стерильного физиологического раствора (тампон или шприц).