ПЦР исследование в Гаспре - страница №4

Chlamydia trachomatis является возбудителем урогенитального хламидиоза. 

Туберкулез является инфекционным заболеванием, которое вызывается микобактериями туберкулеза - палочками Коха.

Анализ РНК HCV - это исследование для определения РНК вируса гепатита С. 

Подготовка пациента строго по инструкции.
Моча (разовая проба) (в лаборатории на нуклеиновые кислоты инфекционных возбудителей исследуется осадок нативного биоматериала). Первую утреннюю или другую (при специальных алгоритмах обследования и методах отбора) (см. комментарий) порцию мочи (не менее 20-30 мл), полученную путем естественного мочеиспускания, отобрать в стерильный контейнер. Если одновременно собирается моча для других исследований (ОАМ, микробиология, БХ и др.), то вторую порцию того же мочеиспускания нужно отобрать во второй контейнер (контейнеры заранее нужно в этом случае пронумеровать по порядку проб).
Внимание! При отборе проб мочи для ПЦР следует тщательно избегать контаминации химическими веществами, кровью, слизью, гноем и микроорганизмами из внешней среды. При подготовке – туалет наружных половых органов проводить без использования мыла и любых других гигиенических средств. Плотно завинтить крышку. Проверить герметичность. Промаркировать Штрих-кодом. Дополнительно отметить на этикетке ПЦР. Не вскрывать! Не замораживать! Не центрифугировать!
Хранение и транспортировка по режиму:
Доставка проб мочи в первичном контейнере:
(1) Оптимальный срок и условия доставки – не более 12 ч при +4 – +8°С (вертикально)*;
2) Допустимый срок и условия доставки – не более 24 ч при +4 – +8°С (вертикально).
Примечание! При невозможности доставки проб в указанные сроки, проконсультируйтесь со специалистами лаборатории о вариантах обработки первичного биоматериала (асептическое получение осадка мочи) или других способах обследования пациента.
Комментарий.
• А. Подготовка пациента. При подготовке пациента соблюдать общие правила для взятия проб мочи с учетом диагностической задачи и протокола клинического обследования пациента:
а) исследование не рекомендуется проводить ранее, чем через 6-7 дней после цистоскопии или других медицинских и диагностических манипуляций в области малого таза и половых органов.
б) Следует учитывать, что для контроля эффективности лечения по эрадикации возбудителя методом ПЦР необходим более длительный период, чем для бактериологического исследования, так как некоторое время из мочевых путей может выделяться ДНК мертвых микроорганизмов. Поэтому исследование рекомендуется проводить не ранее, чем через 2-3 недели после окончания лечения.
в) Женщинам нельзя проводить взятие пробы мочи во время менструаций.
• Взятие образца:
а) Утроенная проба мочи (первая порция) является предпочтительным биоматериалом, так как содержит максимальную концентрацию ДНК инфекционных возбудителей, локализующихся в мочеполовых путях.
б) Примеси гноя , крови, выделений их половых путей могут оказать негативное влияние на результаты ПЦР-исследования. Женщинам желательно закладывать тампон во влагалище перед сбором материала для предупреждения контаминации мочи отделяемым из влагалища. Мужчинам следит тщательно обмыть водой головку полового члена перед отбором проб мочи.
в) При отборе проб следует очень тщательно избегать контаминации пробы мочи микроорганизмами или химическими веществами из внешней среды и соприкосновения с поверхностью кожи и других предметов.
г) Кроме утренней мочи в диагностических исследованиях в урологической диагностике могут быть использованы пробы мочи, отбираемые до и после массажа простаты при топических пробах.
д) При необходимости могут быть использованы нестандартные способы получения проб мочи: перенос пробы мочи в вакуумную пробирку через переходник-пробоотборник возможен также непосредственно из стерильного одноразового контейнера-мочесборника (лежачие больные, маленькие дети) (следует строго соблюдать правила предотвращения внешней контаминации); при катетеризации взятие проб мочи непосредственно в вакуумную пробирку возможно через резиновую заглушку или канюлю системы мочесборника при помощи двухсторонней иглы или переходников, используемых при взятии крови вакуумным способом.

Подготовка пациентов и отбор пробы с каждой локализации строго по инструкции (см. комментарий).
Соскобы/мазки/ отделяемое со слизистых различных локализаций вне урогенитального тракта (конъюнктива, ротоглотка, носоглотка, перианальная зона, патологический очаг) в пробирке с транспортной средой для ПЦР. Инструмент для отбора биоматериала (УГЗ тип А или цитощетка стандартная) выбирается лечащим врачом в зависимости от клинической задачи, выбранной локализации, выявляемого возбудителя (см. комментарий).
Перед взятием биоматериала обеспечить стерильные условия, выделив исследуемую зону стерильными салфетками (при необходимости). В места взятия биоматериала удалить слизь, гной или другое мешающее анализу отделяемое стерильным марлевым тампоном (сухим или смоченным стерильным физиологическим раствором.
Внимание! Строго избегать внешней контаминации при взятии и подготовке проб! Следует полностью исключить возможность соприкосновения рабочей части инструментов с перчатками и другими посторонними поверхностями! Техника отбора биоматериала реализуется в соответствии с выбранным инструментом и локализацией (см. инструкцию) с вращением или поступательным движением, обеспечивающим наиболее полное и равномерное нанесение биоматериала на рабочую часть инструмента. Биоматериал с рабочей части зонда немедленно перенести (инокулировать) в жидкую транспортную среду осторожным помешиванием. Рабочую часть инструмента в пробирке не оставлять. Плотно закрыть крышку пробирки. Проверить герметичность. Промаркировать штрих-кодом. В
направлении/ заявке, по возможности, отметить задачу исследования, тип биоматериала, локализацию, предварительный диагноз, дополнительную клиническую информацию.
Не вскрывать! Не замораживать! Не центрифугировать! Избегать прямого воздействия солнечного света!
Хранение и транспортировка по режиму:
(1) Оптимальный срок и условия доставки – не более 36 ч при +2– +8°С;
(2) Допустимый срок и условия доставки – не более 72 ч при +2 – +4°С.

Подготовка пациентов и отбор пробы с каждой локализации строго по инструкции (см. комментарий).
Соскобы/мазки/ отделяемое со слизистых различных локализаций вне урогенитального тракта (конъюнктива, ротоглотка, носоглотка, перианальная зона, патологический очаг) в пробирке с транспортной средой для ПЦР. Инструмент для отбора биоматериала (УГЗ тип А или цитощетка стандартная) выбирается лечащим врачом в зависимости от клинической задачи, выбранной локализации, выявляемого возбудителя (см. комментарий).
Перед взятием биоматериала обеспечить стерильные условия, выделив исследуемую зону стерильными салфетками (при необходимости). В места взятия биоматериала удалить слизь, гной или другое мешающее анализу отделяемое стерильным марлевым тампоном (сухим или смоченным стерильным физиологическим раствором.
Внимание! Строго избегать внешней контаминации при взятии и подготовке проб! Следует полностью исключить возможность соприкосновения рабочей части инструментов с перчатками и другими посторонними поверхностями! Техника отбора биоматериала реализуется в соответствии с выбранным инструментом и локализацией (см. инструкцию) с вращением или поступательным движением, обеспечивающим наиболее полное и равномерное нанесение биоматериала на рабочую часть инструмента. Биоматериал с рабочей части зонда немедленно перенести (инокулировать) в жидкую транспортную среду осторожным помешиванием. Рабочую часть инструмента в пробирке не оставлять. Плотно закрыть крышку пробирки. Проверить герметичность. Промаркировать штрих-кодом. В
направлении/ заявке, по возможности, отметить задачу исследования, тип биоматериала, локализацию, предварительный диагноз, дополнительную клиническую информацию.
Не вскрывать! Не замораживать! Не центрифугировать! Избегать прямого воздействия солнечного света!
Хранение и транспортировка по режиму:
(1) Оптимальный срок и условия доставки – не более 36 ч при +2– +8°С;
(2) Допустимый срок и условия доставки – не более 72 ч при +2 – +4°С.

Подготовка пациентов и отбор пробы с каждой локализации строго по инструкции (см. комментарий).
Соскобы/мазки/ отделяемое со слизистых различных локализаций вне урогенитального тракта (конъюнктива, ротоглотка, носоглотка, перианальная зона, патологический очаг) в пробирке с транспортной средой для ПЦР. Инструмент для отбора биоматериала (УГЗ тип А или цитощетка стандартная) выбирается лечащим врачом в зависимости от клинической задачи, выбранной локализации, выявляемого возбудителя (см. комментарий).
Перед взятием биоматериала обеспечить стерильные условия, выделив исследуемую зону стерильными салфетками (при необходимости). В места взятия биоматериала удалить слизь, гной или другое мешающее анализу отделяемое стерильным марлевым тампоном (сухим или смоченным стерильным физиологическим раствором.
Внимание! Строго избегать внешней контаминации при взятии и подготовке проб! Следует полностью исключить возможность соприкосновения рабочей части инструментов с перчатками и другими посторонними поверхностями! Техника отбора биоматериала реализуется в соответствии с выбранным инструментом и локализацией (см. инструкцию) с вращением или поступательным движением, обеспечивающим наиболее полное и равномерное нанесение биоматериала на рабочую часть инструмента. Биоматериал с рабочей части зонда немедленно перенести (инокулировать) в жидкую транспортную среду осторожным помешиванием. Рабочую часть инструмента в пробирке не оставлять. Плотно закрыть крышку пробирки. Проверить герметичность. Промаркировать штрих-кодом. В
направлении/ заявке, по возможности, отметить задачу исследования, тип биоматериала, локализацию, предварительный диагноз, дополнительную клиническую информацию.
Не вскрывать! Не замораживать! Не центрифугировать! Избегать прямого воздействия солнечного света!
Хранение и транспортировка по режиму:
(1) Оптимальный срок и условия доставки – не более 36 ч при +2– +8°С;
(2) Допустимый срок и условия доставки – не более 72 ч при +2 – +4°С.

Подготовка пациента строго по инструкции с соблюдением естественного режима питания (см. комментарий).
Кал (нативный биоматериал). При одновременном заказе других исследований кала (посев, микроскопия и др.) пробу для ПЦР-исследования следует отобрать непосредственно в отдельный контейнер. Пробы отбирают с нескольких мест (не с поверхности, которая содержит естественную слизь!) в количестве не менее 2 -5 г (3 - 5 мл ) и не более 1/4 объема контейнера отбирают специальной ложкой (фиксированной на крышке контейнера) сразу после естественной дефекации (желательно на чистый лист бумаги или полиэтиленовую пленку). При отборе избегать попадание в пробы слизи, мочи, выделений из половых органов, непереваренных кусочков пищи, посторонних включений, а также химических реагентов, моющих и дезинфицирующих средств. Плотно завинтить крышку контейнера без удаления ложки. На этикетке контейнера отметить дату и время отбора пробы. Промаркировать штрих-кодом. В направлении/ заявке, по возможности, отметить задачу исследования, тип биоматериала, локализацию, предварительный диагноз, дополнительную клиническую информацию. Не вскрывать! Не замораживать! Не центрифугировать! Избегать прямого воздействия солнечного света!
Хранение и транспортировка по режиму:
(1) Оптимальный срок и условия доставки – не более 24 ч при +4 – +8°С (вертикально).
(2) При сроках доставки более 24 ч допустимо однократное замораживание и хранение первичной пробы при "-18°С" (замораживание должно быть произведено максимально быстро после взятия образца) с доставкой замороженного образца на хладоэлементе (ХЭ) при 0 – +2°С. Внимание! Повторное замораживание и размораживание не допускается!
Комментарий.
• А. Подготовка пациента.
а) Не рекомендуется брать пробу при задержке стула более 36 ч.
б) За несколько суток до применения нельзя использовать лекарственные препараты и медицинские манипуляции, влияющие на состояние желудочно-кишечного тракта (рентгеноконтрастных исследования, слабительные препараты, активированный уголь, лекарственные препараты, содержащие железо).
в) За 48 ч. до исследования рекомендуется исключить прием алкоголя и избегать изменений в пищевом режиме.
г) За 24 ч. до проведения исследования нельзя ставить клизмы.
д) Следует учитывать, что для контроля эффективности лечения по эрадикации возбудителя методом ПЦР необходим более длительный период, чем для микробиологического исследования, так как некоторое время из кишечника может выделяться ДНК мертвых микроорганизмов. Поэтому исследование рекомендуется проводить не ранее, чем через 2-3 недели после окончания лечения.
• Б. Основные принципы исключения отрицательных факторов, влияющих на ПЦР-реакции и результаты исследования при взятии биоматериала.
а) Внимание! При отборе проб для ПЦР следует тщательно избегать контаминации химическими веществами (спиртами, дезинфицирующими и моющими агентами и др.), кровью, слизью, гноем и микроорганизмами из внешней среды
б) У маленьких детей категорически нельзя отбирать пробу непосредственно с поверхности подгузника, так как содержащаяся в них целлюлоза и гели могут отрицательно сказаться на ПЦР-реакции. При необходимости возможно в таких случаях временно разместить на внутренней поверхности подгузника мягкую полиэтиленовую пленку и собрать образец кала с нее.
• В. Специальные замечания:
Для повышения чувствительности и специфичности диагностики рекомендуется проведение нескольких исследований в течение ограниченного промежутка времени.
Состав:
ДНК Shigella
ДНК Salmonella
ДНК Campylobacter
ДНК Adenovirus

Сифилис является венерическим заболеванием, в инфекционном процессе которого поражаются все органы и ткани.

Туберкулез является инфекционным заболеванием, которое вызывается микобактериями туберкулеза - палочками Коха.